Mucoviscidose et Bronchopathies Chroniques

Nous étudions les effets bactéricides des PAMs indiqués sur des souches de bactéries multi-résistantes issues d’expectorations de patients atteints de mucoviscidose. Ces études sont effectuées aussi bien in vitro que dans des modèles d’infections pulmonaires chez la souris et le cobaye. Par ailleurs, nous nous intéressons aux rôles de certaines bactéries (P. aeruginosa et S. aureus en particulier) présentes dans les voies aériennes dans la modulation de l’expression des PAMs dans les poumons de ces patients. Une attention particulière est donnée à l’élucidation des toxines bactériennes et des voies de signalisations impliquées dans cette expression. Ces travaux nous permettent de mieux comprendre le rôle de certains PAMs dans la modulation de la composition du microbiote pulmonaire mais aussi le potentiel thérapeutique de ces PAMs. Nos travaux font aussi partie d’un ensemble d’approches du GDR qui aideront à lutter contre les bactéries multi-résistantes qui sont une cause majeure de mortalité chez les patients atteints de mucoviscidose mais aussi dans d’autres pathologies infectieuses.

Equipe «Mucoviscidose et Bronchopathies Chroniques»

Resp. de l’équipe : Lhousseine TOUQUI

Correspondant GDR : Lhousseine TOUQUI, lhousseine.touqui@pasteur.fr et Alessandra SALIBA, alessandrasaliba@hotmail.com

Adresse complète

Faculté de Médecine de Cochin, 24 rue du Faubourg Saint

acques, 75014 Paris

Code unité

Unité mixte Institut Pasteur/Cochin, Paris V, EA 2511

Tutelle(s)

Adresse internet du laboratoire ou institut

https://research.pasteur.fr/fr/team/mucoviscidose-et-bronchopathies-chroniques-biopathologie-et-phenotype-cliniques/

Airways surface liquid acidification initiates host abnormalities in cystic fibrosis

Simonin J, Bille E, Crambert G, Noel S, Dreano E, Edwards A, Hatton A, Pranke I, Villeret B, Cottart CH, Vrel JP, Urbach V, Baatallah N, Hinzpeter A, Golec A, Touqui L, Galietta LJV, Planelles G, Nassif X, Sallenave JM, Edelman A, Sermet-Gaudelus I. Airways surface liquid acidification initiates host abnormalities in cystic fibrosis. Sci Rep., 2019, Apr 24;9(1):6516-6522.

Cationic antimicrobial peptides: alternatives and/or adjuvants to antibiotics active against methicillin-resistant Staphylococcus aureus and multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa

Geitani R, Ayoub Moubareck C, Touqui L, Karam Sarkis D. Cationic antimicrobial peptides: alternatives and/or adjuvants to antibiotics active against methicillin-resistant Staphylococcus aureus and multidrug-resistant Pseudomonas aeruginosa. BMC Microbiol, 2019, 19(1):54.

RNase 7 but not psoriasin nor sPLA2-IIA associates with Mycobacterium tuberculosis during airway epithelial cell infection

Torres-Juarez F., Touqui L., Leon-Contreras J., Rivas-Santiago C., Enciso-Moreno J.A., Hernández-Pando R. and Rivas-Santiago B. RNase 7 but not psoriasin nor sPLA2-IIA associates with Mycobacterium tuberculosis during airway epithelial cell infection. Pathog Dis, 2018, 76:1-8. doi: 10.1093/femspd/fty005.

Staphylococcus aureus Adenosine Inhibits sPLA2-IIA-Mediated Host Killing in the Airways

Pernet E, Brunet J, Guillemot L, Chignard M, Touqui L, Wu Y. Staphylococcus aureus Adenosine Inhibits sPLA2-IIA-Mediated Host Killing in the Airways. J Immunol. 2015 Jun 1;194(11):5312-9. doi: 10.4049/jimmunol.1402665.

Host-microbe interactions in distal airways: relevance to chronic airway diseases

Martin C, Burgel PR, Lepage P, Andréjak C, de Blic J, Bourdin A, Brouard J, Chanez P, Dalphin JC, Deslée G, Deschildre A, Gosset P, Touqui L, Dusser D. Host-microbe interactions in distal airways: relevance to chronic airway diseases. Eur Respir Rev. 2015 Mar;24(135):78-91. doi: 10.1183/09059180.00011614.

Pseudomonas aeruginosa eradicates Staphylococcus aureus by manipulating the host immunity

Pernet E, Guillemot L, Burgel PR, Martin C, Lambeau G, Sermet-Gaudelus I, Sands D, Leduc D, Morand PC, Jeammet L, Chignard M, Wu Y, Touqui L. Pseudomonas aeruginosa eradicates Staphylococcus aureus by manipulating the host immunity. Nat Commun. 2014 Oct 7;5:5105. doi: 10.1038/ncomms6105.

Secreted group IIA phospholipase A2 protects humans against the group B streptococcus: experimental and clinical evidence

Movert E, Wu Y, Lambeau G, Kahn F, Touqui L, Areschoug T. Secreted group IIA phospholipase A2 protects humans against the group B streptococcus: experimental and clinical evidence. J Infect Dis. 2013 Dec 15;208(12):2025-35. doi: 10.1093/infdis/jit359.

A novel bacterial resistance mechanism against human group IIA-secreted phospholipase A2: role of Streptococcus pyogenes sortase

Movert E, Wu Y, Lambeau G, Touqui L, Areschoug T. A novel bacterial resistance mechanism against human group IIA-secreted phospholipase A2: role of Streptococcus pyogenes sortase A. J Immunol. 2011 Dec 15;187(12):6437-46. doi: 10.4049/jimmunol.1100499.

Type-IIA secreted phospholipase A2 is an endogenous antibiotic-like protein of the host

Wu Y, Raymond B, Goossens PL, Njamkepo E, Guiso N, Paya M, Touqui L. Type-IIA secreted phospholipase A2 is an endogenous antibiotic-like protein of the host. Biochimie. 2010 Jun;92(6):583-7. doi: 10.1016/j.biochi.2010.01.024.

Anthrax lethal toxin down-regulates type-IIA secreted phospholipase A(2) expression through MAPK/NF-kappaB inactivation

Raymond B, Ravaux L, Mémet S, Wu Y, Sturny-Leclère A, Leduc D, Denoyelle C, Goossens PL, Payá M, Raymondjean M, Touqui L. Anthrax lethal toxin down-regulates type-IIA secreted phospholipase A(2) expression through MAPK/NF-kappaB inactivation. Biochem Pharmacol. 2010 Apr 15;79(8):1149-55. doi: 10.1016/j.bcp.2009.11.023.

résistance aux antibiotiques, microbiote, poumons, mucoviscidose, mucus

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